病毒纯化和滴度测定是病毒学研究中非常重要的两个环节。
病毒纯化是应用各种物理、化学方法，以不使病毒受损伤和失活为前提，去除宿主细胞组分等非病毒杂质，提取出高纯度浓缩的病毒样品的过程。这是病毒学研究的重要前提，因为病毒微细形态结构的研究、病毒抗原蛋白的分离提纯、病毒化学成分及其遗传物质（DNA或RNA）的详细研究都需要高纯度的病毒样品。病毒纯度是一个相对的概念，通常可以通过病毒的物理均一性、病毒滴度、蛋白含量比例和免疫学反应等参数来进行评估。
病毒滴度测定则是评估病毒溶液中病毒颗粒的浓度或感染能力的一个指标。病毒滴度通常用来表示在特定条件下，病毒颗粒能够感染细胞的能力，例如半数致死量（LD50）、半数感染量（MID）或转导单位（TU）。病毒滴度的准确测定对于病毒载体的生产、质量控制以及临床应用都非常重要。
病毒滴度的测定方法有多种，包括：
噬斑形成试验（Plaque Forming Assay,PFA）：通过观察病毒在宿主细胞上形成的噬斑数量来计算病毒滴度。
实时定量PCR（ PCR, qPCR）：通过检测病毒遗传物质的数量来计算病毒滴度。
酶联免疫吸附试验（Enzyme-Linked Immunosorbent Assay,ELISA）：通过检测病毒颗粒上的特定蛋白，如p24蛋白，来计算病毒滴度。
细胞病变效应（Cytopathic Effect, CPE）测定：通过观察病毒感染细胞后引起的细胞病变来估算病毒滴度。
报告基因系统：将病毒载体与报告基因相结合，通过检测报告基因的表达或活性来评估病毒滴度。
在实际操作中，根据不同的病毒类型和应用场景，选择合适的纯化和滴度测定方法是非常重要的。这些方法的准确性、重复性和灵敏度都是评价病毒纯化和滴度测定效果的关键指标。
